人*原片段F1+2（F1+2）免疫組化試劑盒,組織塊取材不能太大過厚，才能較好地完成脫水的過程。如果取材太厚，在較短的時間內(nèi)脫水不*，將可引起一系列的問題，比如浸蠟不*，切片不好完成，切不完整。由于先天不足，導(dǎo)致后來切片染色的脫落，造成染色的失敗，或者由此反復(fù)操作，造成人力物力的浪費，造成病理報告的延期發(fā)出等。因此，對取材的要求是除了要求要有藝術(shù)性外，即平整、外觀好看，還要求適中。
規(guī)格：50T/100T
存儲：-20℃
運輸：干冰+冰袋運輸
人*原片段F1+2（F1+2）免疫組化試劑盒,應(yīng)用于免疫組織化學(xué)染色的切片，對切片的質(zhì)量要求較高，切片必須完整，平展、無汽泡，無鄒折，這樣有利在染色時的沖洗，有利于切片的牢固附貼。如果切片不平展，免疫組化染色后，可出現(xiàn)染色不均勻的現(xiàn)象，顏色深淺不一， 不平。如果切片有汽泡切片在烘烤時，由于汽泡的破裂影響了汽泡周圍的組織，在其周圍可觀察到深淺不一的染色。如果切片有鄒折，免疫組化染色后，在鄒折的地方有深淺不一的顏色，這是一種假陽性，容易引走混淆。應(yīng)用于免疫組化染色的切片。由于整個過程需經(jīng)幾個階段的處理，如抗原修復(fù)時抗原修復(fù)液的沸騰且需持續(xù)十幾分鐘，PBS的反復(fù)沖洗，有的甚至于4℃冰箱中孵育達十幾小時。因此，對切片的質(zhì)量要求很高，尤其是切片的附貼程度。以往有人主張切片在60℃以下烘烤30-60分鐘即可按此進行結(jié)果是切片掉片嚴重，切片松動率占*。切片究竟烘烤多長時間才合適，既不脫片和適合各項要求，又不至于破壞抗原。幾組實驗［］診斷P173認為，切片在60℃的恒溫干燥箱中烘烤2-5小時zui為合適。這是因為：抗原可耐受如此的溫度，病理科一般使用的石蠟，其熔點在60℃左右，組織浸蠟時，浸蠟箱中的溫度，一般都調(diào)在65℃左右，組織在這樣溫度中要浸泡2小時以上，才能達到*地浸蠟。組織中的抗原已經(jīng)受了65℃的溫度考驗，保存下來的抗原，都已具有耐熱性。另外，經(jīng)上述時間烘烤出來的切片，附貼牢固，抗原保存好，染色成功率達*，保證了病理診斷的及時性和準確性。
    特需要注意的是，不管是應(yīng)用于診斷的切片還是研究用的切片，烘烤后應(yīng)盡快進行染色。如果切片切完后，遲遲不進行染色，存放于室溫中或工作冰箱中，切片中的抗原將會隨著時間的延長而逐漸消失，甚至出現(xiàn)假陰性。原則上是新鮮切片，即行染色，染多少張切多少張，這樣才能盡可能的保存表達更多的抗原。
,PBS的沖洗：
免疫組化的染色過程，除了前面的處理和加入的抗體外，都在PBS的沖沖洗洗中度過，PBS沖洗的正確與否，也是導(dǎo)致zui后結(jié)果的關(guān)鍵。
1.單獨沖洗，防止交叉反應(yīng)造成污染。
臨床上每天檢測的病例很多，所用的抗體種類及項目也多，如果在加入一抗孵育完后，將它們在一個缸內(nèi)洗，這樣就會造成交叉污染，影響zui后的結(jié)果。正確的做法是單獨地進行沖洗，沖洗的PBS為一次性，保證切片沒有相互交叉污染的機會。
2.溫柔沖洗，防止切片的脫落。
沖洗切片，取出切片，將PBS從上輕輕地沖洗，讓PBS自上而下流下來，不要拿起切片將PBS對準切片沖洗，這樣由于沖出的PBS有一定的沖擊力，很容易使切片周邊引起松動，導(dǎo)致切片的脫落。
3.沖洗的時間要足夠，才能*洗去結(jié)合的物質(zhì)。
沖洗切片有人提出用微振蕩器振染，振下未結(jié)合的各種物，使之不產(chǎn)生背景，此種做法一是浪費時間，二是很容易導(dǎo)致切片的脫落。切片的沖洗據(jù)實踐認為，用一小燒杯柔和地于切片上沖洗，就能*沖洗去未結(jié)合的物質(zhì)，無需附加其它條件，沖洗好于切片上再注入PBS，持續(xù)2分鐘左右就*足夠了。
4.PBS的PH和離子強度的使用和要求。
劉彥仿指出：中性及弱鹼性條件（PH7－8）有利于免疫復(fù)合物的形成，而酸性條件則有利于分解；低離子強度有利于免疫復(fù)合物的形成，而高離子強度則有利于分解。免疫組化P56我們目前常用的PBS的PH在7.4-7.6濃度是0.01M，根據(jù)本室十幾年來的使用情況，認為該溶液價格便宜配制方面，使用效果好。  

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