在以靜態(tài)光散射（SLS）和動態(tài)光散射（DLS）原理為基礎(chǔ)的動靜態(tài)光散射儀器中，瑞士LS出品的三維光散射儀3D LS是一款新型儀器。它是一款采用互相關(guān)技術(shù)的三維激光光散射儀，利用兩束激光對同一散射矢量和同一散射體積進(jìn)行兩個(gè)平行的散射實(shí)驗(yàn)來抑制多重散射的所帶來的困擾。因此三維光散射技術(shù)突破了傳統(tǒng)光散射技術(shù)對樣品濃度和濁度的限制，3D LS不僅適用于標(biāo)準(zhǔn)的透明的稀溶液的動靜態(tài)光散射實(shí)驗(yàn)研究，同時(shí)它也將動靜態(tài)光散射的應(yīng)用范圍拓寬至高濃度和渾濁體系。使用三維光散射技術(shù)，用戶無需對高濃度樣品進(jìn)行稀釋，可以直接研究自然無擾狀態(tài)下的體系，從而滿足了廣大高分子，膠體化學(xué)，軟物質(zhì)，材料科學(xué)，生命科學(xué)等領(lǐng)域研究人員在溶液表征上的要求。
在三維互相關(guān)技術(shù)的基礎(chǔ)上，瑞士光散射儀器公司又推出全新的3D調(diào)制技術(shù)（EP 2365313 A1），可進(jìn)一步提高互相關(guān)技術(shù)的信噪比，測試更高濃度或濁度的樣品。需要注意的是，與經(jīng)典光散射不同，三維光散射相干截距理想值趨近于0.2，調(diào)制三維光散射相干截距理想值趨近于0.8。
結(jié)合下圖，我們簡單的了解一下LSI*的技術(shù)在測試中所帶來的優(yōu)勢：A-F字母分別代表不同配置的光散射儀，其中：A為傳統(tǒng)的自相關(guān)配置，B為A基礎(chǔ)上配置SG，C為3D散射，D為3D加配SG，E為調(diào)制3D，F(xiàn)為調(diào)制3D配置SG。
該儀器特點(diǎn)如下：
動態(tài)/靜態(tài)測量角范圍8°-155°，測量角精度優(yōu)于0.01°，關(guān)機(jī)自動定位至140°。
提供多種尺寸的樣品瓶支架，圓柱形樣品瓶直徑10mm或5mm，使用5mm 樣品瓶時(shí)，樣品量只需200mL。
選配溫控裝置，溫控范圍10-70℃，溫度低于10℃時(shí)，需使用干燥空氣或氮?dú)獯祾咭员苊馑Y(jié)。
采用APD（雪崩型光電二極管檢測器），具有高靈敏度（在632.8nm波長下量子效率>65%），能測量弱光散射體系。
單模光纖準(zhǔn)直光學(xué)與集成檢測系統(tǒng)。
標(biāo)配氦氖激光器：632.8nm，21mW，偏振度500:1，TEM00。
雙通道多tau相關(guān)器，最小延遲時(shí)間12.5ns，延遲時(shí)間50min，2×608互相關(guān)通道，1088自相關(guān)通道。
檢測器前2.5cm的支架可放置不同標(biāo)準(zhǔn)的濾光片。
提供自動衰減功能和手動衰減功能，0-光強(qiáng)連續(xù)衰減。
激光衰減系統(tǒng)結(jié)合在線入射光強(qiáng)的測量，軟件能夠記錄光強(qiáng)，并用于靜態(tài)光散射數(shù)據(jù)的歸一化。
通過軟件反控儀器操作和數(shù)據(jù)處理；使用累計(jì)量法和約束正則CONTIN算法，自動測定粒徑。
升級選項(xiàng)：
樣品瓶旋轉(zhuǎn)裝置（SG）：用于非遍歷性體系如凝膠的測試，同時(shí)還可以使用方形樣品瓶，改變光程，用于高濁度樣品的測試；
格蘭湯普森棱鏡（GTP）：用于去偏振光散射的實(shí)驗(yàn)，表征各向異性樣品；
濾光片：用于去除632.8nm以外雜散光，可用于有熒光樣品的測試；
高溫選項(xiàng)：工作測試溫度上限至140℃，可用于聚烯烴的表征。
產(chǎn)品功能：
該儀器可用于旋轉(zhuǎn)半徑、流體力學(xué)半徑（粒徑0.15-5000nm）、粒徑分布、多分散性的測定，分子量、擴(kuò)散系數(shù)、均方位移、第二維列系數(shù)的測定，結(jié)構(gòu)因子、形狀因子的研究，帶電系統(tǒng)中的粒間距的測定，過程監(jiān)控（凝膠、老化、聚集……），該儀器可用來測試高度渾濁的樣品，可測試濁度上限t=100cm-1。
相關(guān)耗材：
10mm玻璃樣品瓶，5mm玻璃樣品瓶；各種規(guī)格、各種材質(zhì)的針頭式樣品過濾器。（5mm樣品瓶需訂貨）
部分論文：
1. Mingqian Tan et al., Protein corona formation of human serum albumin with carbon quantum dots from roast salmon, Food & Function（DOI: 10.1039/c9fo02967b ）;
2. Chao Wu et al., The mechanism of improved thermal stability of protein-enriched O/W emulsions by soy protein particles, Food & Function, 2020, 11(2);
3. Decheng Wu et al., Construction of Tough, in-situ Forming Double Network Hydrogels with Good Biocompatibility, ACS Applied Materials & Interfaces, 2017, 9 (3), 2205–2212;
4. C Zhou et al., Controllable synthesis of CdS quantum dots and their photovoltaic application on quantum-dot-sensitized ZnO nanorods, Journal of Solid State Electrochemistry , 2016 , 20 (2) :533-540
5. Yue Geng et al., Formation of 3-mercaptopropionic acid-ZnxCd1?xSe quantum dots with tunable bａnd gap, Chemical Physics Letters Volume 634, 1 August 2015, Pages 156–159;
6. Frédéric Cardinauxet al., Interplay between Spinodal Decomposition and Glass Formation in Proteins Exhibiting Short-Range Attractions, Phys. Rev. Lett. 99, 118301 ;
7. Rein V. Ulijn et al., Biocatalytic induction of supramolecular order, Nature Chemistry, volume 2, pages 1089–1094 (2010);
8. Petri-Fink et al., Characterizing nanoparticles in complex biological media and physiological fluids with depolarized dynamic light scattering, Nanoscale, 2015, 7, 5991-5997;
9. Sandor Balog et al., Dynamic Depolarized Light Scattering of Small Round Plasmonic Nanoparticles: When Imperfection is Only Perfect, J. Phys. Chem. C, 2014, 118 (31), pp 17968–17974;
10. O.Glatter et al., Dynamic light scattering in turbid colloidal dispersions: A comparison between the modified flat-cell light-scattering instrument and 3D dynamic light-scattering instrument, Journal of Colloid and Interface Science, Volume 305, Issue 1, 1 January 2007, Pages 88-93.
