所有G蛋白偶聯(lián)受體(GPCR)在通過配體結(jié)合后,都會(huì)通過一條共同途徑迅速發(fā)生脫敏作用。 β-arrestin(一種細(xì)胞質(zhì)蛋白)與受體的結(jié)合使GPCR信號(hào)失活,并啟動(dòng)了受體向細(xì)胞內(nèi)的易位,在此細(xì)胞中配體被去除,受體被循環(huán)回到細(xì)胞膜。通過將熒光標(biāo)記(例如GFP)附著到β-arrestin,可以檢測(cè)受體arrestin復(fù)合物的位置。由于脫敏僅發(fā)生在受體上,因此檢測(cè)β-arrestin的易位和隨后的受體再循環(huán)提供了檢測(cè)GPCR靶標(biāo)可靠方法。蛋白質(zhì)易位GPCR信號(hào)檢測(cè)試劑盒提供了功能強(qiáng)大的功能分析,可通過熒光成像篩選目標(biāo)化合物針對(duì)已知或孤立GPCR靶標(biāo)的活性。靶向GPCR的誘導(dǎo)熒光向細(xì)胞膜和內(nèi)吞囊泡的移位。百螢生物為您提供優(yōu)質(zhì)的蛋白質(zhì)易位GPCR信號(hào)檢測(cè)試劑盒。
適用儀器
熒光顯微鏡 | |
Ex: | FITC濾波片組 |
Em: | FITC濾波片組 |
推薦孔板: | 黑色透明底板 |
樣品實(shí)驗(yàn)方案
概述
準(zhǔn)備細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染
準(zhǔn)備Transfectamine 5000-DNA混合物
將Transfectamine 5000-DNA混合物添加到細(xì)胞培養(yǎng)物中,并孵育過夜
轉(zhuǎn)染后24-30小時(shí)將轉(zhuǎn)染的細(xì)胞轉(zhuǎn)移到96孔板中,并將培養(yǎng)物孵育過夜
在熒光顯微鏡下分析由GPCR引起的轉(zhuǎn)運(yùn)
細(xì)胞準(zhǔn)備
細(xì)胞密度在轉(zhuǎn)染時(shí)它們將達(dá)到約60-70%的融合度。
轉(zhuǎn)染前用新鮮的生長培養(yǎng)基替換。
注意:例如,對(duì)于6孔板,每孔替換為2 mL培養(yǎng)基,對(duì)于10 cm板,則替換為6 mL培養(yǎng)基。
儲(chǔ)備溶液配制
除非另有說明,否則所有未使用的儲(chǔ)備溶液應(yīng)分為一次性使用的等分試樣,并在制備后儲(chǔ)存在-20°C下。避免重復(fù)凍融循環(huán)。
β-arrestin-GFPDNA儲(chǔ)備溶液
向小瓶β-arrestin-GFPDNA(組分A)中加入10 µL ddH2O,充分混合至終濃度為1 µg / µL。
操作步驟
1.將3 µg DNA(例如1.5 µg Beta-arrestin-GFP DNA儲(chǔ)備液和1.5 µg您準(zhǔn)備的GPCR DNA)與200 µL無血清培養(yǎng)基混合。
2.向混合物中加入9 µL Transfectamine 5000(組分B)。
3.充分混合并在室溫下孵育20分鐘。
注意:Transfectamine 5000和DNA的比例需要針對(duì)不同的細(xì)胞系進(jìn)行優(yōu)化,通常,在我們的測(cè)試中,Transfectamine 5000轉(zhuǎn)染試劑(µL)與DNA(µg)的比例應(yīng)為3-5 µL:1ug。
表1. 6孔板和10 cm板的樣本表
6孔板(每孔) | 10cm板 | |
新鮮培養(yǎng)基 | 2 mL | 6 mL |
質(zhì)粒 | 3 µg | 10 µg |
無血清培養(yǎng)基 | 200 µL | 600 µL |
Transfectamine 5000轉(zhuǎn)染試劑 | ~9 µL | ~30 µL |
轉(zhuǎn)染和轉(zhuǎn)運(yùn)方案
1.將Transfectamine 5000 -DNA混合物添加到培養(yǎng)板中,并孵育過夜。
注意事項(xiàng):在轉(zhuǎn)染后16小時(shí)即可檢測(cè)到重組蛋白。轉(zhuǎn)染后72?96小時(shí)可觀察到大表達(dá)水平。
2.轉(zhuǎn)染后24-30小時(shí)將轉(zhuǎn)染的細(xì)胞轉(zhuǎn)移到96孔板中,并孵育過夜。
使用FITC濾光片(Ex / Em = 488/530 nm)在熒光顯微鏡下檢測(cè)受體誘導(dǎo)的β-arrestin易位。