溶液配制方案

除非另有說明，所有未使用的儲備溶液應分成一次性等份，并在制備后儲存在-20°C。避免反復凍融循環(huán)。

1.iFluor 488 馬來酰亞胺儲備溶液（溶液 B） ：

將無水 DMSO 添加到 iFluor 488 馬來酰亞胺小瓶中，制成 10 mM 儲備溶液。通過移液或渦旋充分混合。

注意     開始綴合前準備染料儲備溶液（溶液 B）。及時使用。延長儲存染料原液可能會降低染料活性。避光防潮時，溶液 B 可在冰箱中保存長達 4 周。避免凍融循環(huán)。

2. 蛋白原液（A液）

將 100 μL 反應緩沖液（例如，pH ~6.0 的 100 mM MES 緩沖液）與 900 μL 目標蛋白溶液（例如抗體，蛋白濃度 > 2 mg/mL 如果可能）混合，得到 1 mL 蛋白標記庫存溶液。

注1：蛋白質溶液（溶液 A）的 pH 應為 6.5 ± 0.5。

注2：不純的抗體、穩(wěn)定的牛血清蛋白（BSA）抗體或明膠不會被很好的標記。疊D化鈉或硫柳汞的存在也可能干擾綴合反應?？梢酝ㄟ^透析或旋轉柱除去疊D化鈉或硫柳汞，以獲得標記結果。

注3：如果蛋白質濃度低于 2 mg/mL，結合效率會顯著降低。為了獲得z佳標記效率，建議蛋白質濃度范圍為 2-10 mg/mL。

可選：如果您的蛋白質不含游離半胱an酸，則必須用 DTT 或 TCEP 處理蛋白質以生成硫醇基團。 DTT 或 TCEP 用于將二硫鍵轉化為兩個游離硫醇基團。如果使用 DTT，則必須在將馬來酰亞胺染料與蛋白質結合之前通過透析或凝膠過濾除去游離 DTT。以下是生成游離硫醇基團的示例方案：

1.在蒸餾水中制備 1 M DTT (15.4 mg/100 µL) 的新鮮溶液。

2.在 20 mM DTT 中制備 IgG 溶液：混合時每 ml IgG 溶液添加 20 µL DTT 庫存。在室溫下靜置 30 分鐘，無需額外混合（以盡量減少半胱an酸再氧化為胱an酸）。

3.將還原的 IgG 通過用“交換緩沖液"預平衡的過濾柱。從柱中收集 0.25 mL 餾分。

4.確定蛋白質濃度并將大部分 IgG 的級分合并。這可以通過分光光度法或比色法來完成。

5.此步驟后盡快進行綴合（請參閱示例實驗方案）。

注意：為了獲得z佳結果，IgG 溶液應 >4 mg/mL。如果抗體低于 2 mg/mL，則應濃縮。額外包括 10% 的緩沖液交換柱損失。

注意：幾乎可以在 pH 7-7.5 的任何緩沖液中進行還原，例如 MES、磷酸鹽或 TRIS 緩沖液。

注意：步驟 3 和 4 可以用透析代替。